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Tierisches Gesamt-RNA-Isolierungskit Gesamt-RNA-Extraktions- und Reinigungskits für tierische Gewebe und Zellen

Kit-Beschreibung:

Extrahieren Sie schnell und effizient hochreine und hochwertige Gesamt-RNA aus verschiedenen tierischen Geweben.

Sie müssen sich keine Sorgen über den RNA-Abbau machen.Das gesamte System ist RNase-frei

Entfernen Sie DNA effektiv mit der DNA-Reinigungssäule

Entfernen Sie DNA, ohne DNase hinzuzufügen

Ganz einfach: Alle Vorgänge werden bei Raumtemperatur durchgeführt

Schnell – der Vorgang kann in 30 Minuten abgeschlossen werden

Sicher – kein organisches Reagenz verwendet

Hohe Reinheit – OD260/280≈1,8–2,1

Vorherige Stärke


Produktdetail

Produkt Tags

FAQ

Beschreibungen der Kits

50 Vorbereitungen, 200 Vorbereitungen

Dieses Kit verwendet dieSpalte und Formel drehenvon unserem Unternehmen entwickelt, das mit hoher Effizienz hochreine und hochwertige Gesamt-RNA aus verschiedenen tierischen Geweben extrahieren kann. Es bietet eine effiziente DNA-Reinigungssäule, die genomische DNA einfach und zeitsparend vom Überstand und Gewebelysat trennen und adsorbieren kann;Die reine RNA-Säule kann RNA effizient binden und kann mit einer einzigartigen Formel viele Proben gleichzeitig verarbeiten.

Das gesamte System ist RNase-frei, sodass die extrahierte RNA nicht abgebaut wird;Pufferwaschsystem für Puffer RW1 und Puffer RW2, sodass die erhaltene RNA frei von Protein-, DNA-, Ionen- und organischen Verbindungen ist.

Kit-Komponenten

Tier-Gesamt-RNA-Isolierungskit
Kit-Komponenten RE-03011 RE-03014
50 T 200 T
Puffer RL1* 25 ml 100 ml
Puffer RL2 15 ml 60 ml
Puffer RW1* 25 ml 100 ml
Puffer RW2 24 ml 96 ml
RNase-freies ddH2O 10 ml 40 ml
Nur-RNA-Säule 50 200
DNA-Reinigungssäule 50 200
Bedienungsanleitung 1 Stück 1 Stück

 

Produktinformation

Format Spalte drehen Reinigungskomponente Foregene-Säule, Reagenz
Fluss 1–24 Proben Zeit pro Vorbereitung ~30 Min. (24 Proben)
Zentrifuge Tischzentrifuge Pyrolysetrennung Zentrifugale Trennung
Probe Tierisches Gewebe;Zelle Probenmenge Gewebe: 10–20 mg;Zelle:(1-5)×106
Elutionsvolumen 50–200 μL Maximales Ladevolumen 850 μL

 

Merkmale und Vorteile

■ Sie müssen sich keine Sorgen über den RNA-Abbau machen;das gesamte System ist RNase-frei
■ Entfernen Sie effektiv DNA mithilfe der DNA-Reinigungssäule
■ DNA entfernen, ohne DNase hinzuzufügen
■ Einfach – alle Vorgänge werden bei Raumtemperatur durchgeführt
■ Schnell – der Vorgang kann in 30 Minuten abgeschlossen werden
■ Sicher – kein organisches Reagenz erforderlich
■ Hohe Reinheit -OD260/280≈1,8-2,1

Vorteile des foregene RNA-Isolierungskits

Kit-Anwendung

Es eignet sich für die Extraktion und Reinigung von Gesamt-RNA aus einer Vielzahl frischer oder gefrorener tierischer Gewebe oder kultivierter Zellen.

Produktparameter

■ Downstream-Anwendungen: Erststrang-cDNA-Synthese, RT-PCR, molekulares Klonen, Northern Blot usw.
■ Proben: tierische Gewebe, kultivierte Zellen
■ Dosierung: Gewebe 10–20 mg, Zellen (2–5)×106
■ Maximale DNA-Bindungskapazität der Reinigungssäule: 80 μg
■ Elutionsvolumen: 50–200 μl

tierische Gesamt-RNA – einfacher Arbeitsablauf

Diagramm

Animal Total RNA Isolation Kit behandelt 20 mg
Frische Mäuseproben, 5 % gereinigte Gesamt-RNA, 1 % Agar

Glykogel-Elektrophorese
1: Milz 2: Niere
3: Leber 4: Herz

Lagerung und Haltbarkeit

Das Kit kann 24 Monate lang bei Raumtemperatur (15–25 °C) oder länger bei 2–8 °C gelagert werden.Puffer RL1 kann nach Zugabe von β-Mercaptoethanol (optional) einen Monat lang bei 4 °C gelagert werden.

Zitierte Artikel

1.WENN:18.808:Zheng, Q., Qin, F., Luo, R., et al.mRNA-beladene lipidähnliche Nanopartikel zur Bearbeitung der Leberbasis durch Optimierung des zentralen Verbunddesigns.Adv.Funktion.Mater.2021, 31, 2011068.doi:10.1002/adfm.202011068.

2.WENN:18.187:He X, Hong W, Yang J, et al.Die spontane Apoptose von Zellen in der therapeutischen Stammzellpräparation übt immunmodulatorische Wirkungen durch die Freisetzung von Phosphatidylserin aus.Signaltransduktionsziel Ther.14.07.2021;6(1):270.doi: 10.1038/s41392-021-00688-z.

3.WENN: 17,97:Dai Z, Liu H, Liao J, et al.Die N7-Methylguanosin-tRNA-Modifikation verbessert die onkogene mRNA-Translation und fördert das Fortschreiten des intrahepatischen Cholangiokarzinoms.Mol Zelle.29. Juli 2021: S1097-2765(21)00555-4.doi: 10.1016/j.molcel.2021.07.003.

4.WENN:9.225:Cao X, Shu Y, Chen Y, et al.Mettl14-vermittelte m6A-Modifikation erleichtert die Leberregeneration durch Aufrechterhaltung der Homöostase des endoplasmatischen Retikulums.Zellmol Gastroenterol Hepatol.2021;12(2):633-651.doi: 10.1016/j.jcmgh.2021.04.001.

 

RNA-Isolierungskits für andere Beispielquellenstehen zur Verfügung:

Zellen, Pflanzen, Viren, Blut usw.


  • Vorherige:
  • Nächste:

  • RNA wird nicht extrahiert oder die RNA-Ausbeute ist gering

    Es gibt oft eine Vielzahl von Faktoren, die die Rückgewinnungseffizienz beeinflussen, wie zum Beispiel: RNA-Gehalt der Gewebeprobe, Betriebsmethode, Elutionsvolumen usw.

    1. Während des Betriebs wurde eine Eisbad- oder kryogene (4 °C) Zentrifugation durchgeführt.

    Empfehlung: Während des gesamten Prozesses bei Raumtemperatur (15–25 °C) arbeiten, kein Eisbad durchführen und bei niedrigen Temperaturen zentrifugieren.

    2. Unsachgemäße Probenkonservierung oder übermäßig lange Probenlagerung.

    Empfehlung: Proben bei -80 °C lagern oder in flüssigem Stickstoff einfrieren und wiederholtes Einfrieren und Auftauen vermeiden;Versuchen Sie, frisches Gewebe oder kultivierte Zellen für die RNA-Extraktion zu verwenden.

    3. Unzureichende Probenlyse.

    Empfehlung: Achten Sie bei der Homogenisierung von Gewebe darauf, dass das Gewebe ausreichend homogenisiert ist und die Gewebezellen ausreichend gespalten sind, um die RNA-Freisetzung zu erklären.

    4. Der Eluent wurde nicht korrekt hinzugefügt.

    Empfehlung: Bestätigen Sie, dass RNase-Free ddH2O wird tropfenweise in die Mitte der Membran der Reinigungssäule gegeben.

    5. Es wurde nicht das richtige Volumen an absolutem Ethanol zu Puffer RL2 oder Puffer RW2 hinzugefügt.

    Empfehlung: Befolgen Sie die Anweisungen, geben Sie die richtige Menge absolutes Ethanol zu Puffer RL2 und Puffer RW2 hinzu und mischen Sie gut, bevor Sie das Kit verwenden.

    6. Die Dosierung der Gewebeprobe ist nicht angemessen.

    Empfehlung: Verwenden Sie 10–20 mg Gewebe oder (1–5) × 106Zellen pro 500 μl Puffer RL1, da eine übermäßige Gewebenutzung zu einer verringerten RNA-Extraktion führen kann.

    7. Falsches Elutionsvolumen oder unvollständige Elution.

    Empfehlung: Das Elutionsvolumen der Reinigungssäule beträgt 50-200 μl;Wenn der Elutionseffekt nicht zufriedenstellend ist, wird empfohlen, die Platzierungszeit bei Raumtemperatur nach Zugabe von vorgewärmtem RNase-Free ddH zu verlängern2O, zB für 5-10 Min.

    8. Die Reinigungssäule weist nach dem Waschen mit Puffer RW2 Ethanolrückstände auf.

    Empfehlung: Wenn nach dem Waschen des Puffers RW2 und der Zentrifugation des leeren Röhrchens für 1 Minute Ethanolrückstände vorhanden sind, kann die Zeit für die Zentrifugation des leeren Röhrchens auf 2 Minuten erhöht werden, oder die Reinigungssäule kann 5 Minuten lang auf Raumtemperatur gestellt werden, um das restliche Ethanol ausreichend zu entfernen.

    Gereinigte RNA wird abgebaut

    Die Qualität der gereinigten RNA hängt von Faktoren wie der Konservierung der Probe, RNase-Kontamination und Manipulation usw. ab.

    1. Gewebeproben werden nicht rechtzeitig aufbewahrt.

    Empfehlung: Wenn Gewebeproben oder Zellen nicht rechtzeitig nach der Entnahme verwendet werden, kryokonservieren Sie sie sofort bei -80 °C oder flüssigem Stickstoff.Verwenden Sie zur Extraktion von RNA nach Möglichkeit eine frisch entnommene Gewebe- oder Zellprobe.

    2. Wiederholtes Einfrieren und Auftauen von Gewebeproben.

    Empfehlung: Bei der Lagerung von Gewebeproben ist es am besten, diese zur Konservierung in kleine Stücke zu schneiden und bei der Verwendung eines der Stücke zu entfernen, um ein wiederholtes Einfrieren und Auftauen der Probe und den Abbau der RNA zu vermeiden.

    3. RNase wird eingeführt oder es werden während der Operation keine Einweghandschuhe, Masken usw. getragen.

    Empfehlung: RNA-Extraktionsexperimente werden am besten in separaten RNA-Manipulationsräumen durchgeführt und der Tisch wird vor dem Experiment abgeräumt.

    Tragen Sie während des Experiments Einweghandschuhe und -masken, um den durch die Einführung von RNase verursachten RNA-Abbau zu minimieren.

    4. Reagenzien werden während des Gebrauchs mit RNase kontaminiert.

    Empfehlung: Für entsprechende Experimente durch ein neues Animal Total RNA Isolation Kit ersetzen.

    5. Die bei der RNA-Manipulation verwendeten Zentrifugenröhrchen, Spitzen usw. sind mit RNase kontaminiert.

    Empfehlung: Stellen Sie sicher, dass die bei der RNA-Extraktion verwendeten Zentrifugenröhrchen, Spitzen, Pipetten usw. alle RNase-frei sind.

    Die gereinigte gewonnene RNA wirkt sich auf nachgelagerte Experimente aus

    Durch die Reinigungssäule gereinigte RNA. Wenn die Salzionen und der Proteingehalt zu groß sind, wirkt sich dies auf nachgelagerte Experimente aus, wie zum Beispiel: Reverse Transkription,Northern Blot et al.

    1. Die eluierte RNA weist Salzionenreste auf.

    Empfehlung: Bestätigen Sie, dass dem Puffer RW2 das richtige Volumen Ethanol zugesetzt wurde, und führen Sie zwei Reinigungssäulenwaschvorgänge mit der für den Betrieb angegebenen Zentrifugalgeschwindigkeit durch.Wenn Salzionenrückstände vorhanden sind, lassen Sie die Reinigungssäule 5 Minuten lang bei Raumtemperatur auf Puffer RW2 stehen und führen Sie eine Zentrifugation durch, um die Entfernung von Salzverunreinigungen zu maximieren.

    2. Ethanolrückstände in eluierter RNA.

    Empfehlung: Bestätigen Sie, dass Sie nach dem Waschen mit Puffer RW2 den Zentrifugationsvorgang des leeren Röhrchens mit der für den Betrieb angegebenen Zentrifugationsgeschwindigkeit durchführen, die Zeit des Zentrifugationsvorgangs des leeren Röhrchens auf 2 Minuten erhöhen, wenn noch Ethanolrückstände vorhanden sind, oder das Gerät nach der Zentrifugation des leeren Röhrchens 5 Minuten lang bei Raumtemperatur belassen, um die Entfernung von Ethanolrückständen zu maximieren.

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